Ein unentbehrliches Instrument für das Mikroskopielabor.
Das Konfokalmikroskop C2 + ist ein grundlegendes Modell innerhalb der Familie konfokaler Nikon-Produkte. Der C2 + ist als wesentliches Mikroskopierwerkzeug für das Labor konzipiert und bietet leistungsstarke und robuste Bildgebungsfunktionen. Die hocheffizienten Scanköpfe und Detektoren in Verbindung mit der einzigartigen Optik von Nikon bieten überlegene konfokale Bilder. Mit den Hochgeschwindigkeits-Galvanoscannern, die mit Geschwindigkeiten von bis zu 100 fps * arbeiten, können selbst die schnellschlagenden Bewegungen der Herzmuskeln präzise erfasst werden. Das System bietet auch die gleichzeitige Erfassung von drei Fluoreszenzkanälen plus DIC in einem einzigen Scan. Für Forschungszwecke, die spektrale Bildgebungsfunktionen erfordern, bietet das C2si + System von Nikon zusätzlich zu den Standard-Fluoreszenzdetektoreinheiten dedizierte Spektraldetektoreinheiten. Das C2si + -System ermöglicht hochpräzise und schnelle 32-Kanal-Spektralbildgebung oder hochempfindliche Spektralbildgebung. Auf dem Ruf unglaublicher Stabilität und einfacher Bedienbarkeit in Verbindung mit überlegenen optischen Technologien aufgebaut, ist das konfokale System C2 + ein unverzichtbares Laborwerkzeug.
*mit 8x Zoom oder größer
Mit Ni-E aufrechtem Mikroskop konfiguriert
Hauptmerkmale
Hochgeschwindigkeitserfassung von hochauflösenden Bildern
Galvanometer-basierte High-Speed-Scanning ermöglicht die konfokale Bildgebung von schnellen, dynamischen Ereignissen in lebenden Zellen, wie die schlagende Bewegung von Herzmuskelzellen. In herkömmlichen konfokalen Systemen kann schnelles bidirektionales Scannen zu Pixelverschiebungen führen.
Der Pixel-Shift-Korrekturmechanismus des C2 + -Konfokussystems gewährleistet jedoch die Erfassung von Bildern höchster Qualität selbst bei schneller bidirektionaler Abtastung.
Bildqualität
Die beispiellose Optik und das bewährte, hocheffiziente optische Design von Nikon sorgen für die hellsten und schärfsten Bilder bei den größten Arbeitsabständen.
Hocheffiziente Scanköpfe und Detektoren
Die kompakte Scan-Kopfgröße ermöglicht die Verwendung des C2 + mit einer Vielzahl von Nikon-Mikroskopen. Der C2 + verwendet hochpräzise Spiegel und optisch überlegene kreisförmige Lochblenden und räumlich von den Detektoren entfernt, um Quellen von Wärme und Rauschen zu isolieren, was eine rauscharme, kontrastreiche und qualitativ hochwertige konfokale Bildgebung ermöglicht. Das neu entwickelte Scanner-Antriebssystem und die einzigartige Bildkorrekturtechnik von Nikon ermöglichen Hochgeschwindigkeitsaufnahmen mit 8 fps (512 x 512 Pixel) und 100 fps (512 x 32 Pixel).
Hochleistungsoptik
CFI Apochromat Lambda S-Serie
Diese Objektive mit hoher numerischer Apertur
(NA) bieten chromatische Aberrationskorrektur über einen Wellenlängenbereich
von ultraviolett bis infrarot und sind ideal für mehrfarbige konfokale
Bildgebung. Insbesondere weist die LWD Lambda S 40XC WI-Linse einen extrem
breiten chromatischen Aberrationskorrekturbereich von 405 nm bis nahe IR auf.
Die Transmissionseigenschaften dieser Objektive werden durch die exklusive Nano
Crystal Beschichtungs-Technologie von Nikon verbessert.
CFI Apochromat LWD Lambda S 20XC WI, NA0.95
CFI Apochromat Lambda S 40XC WI, NA1.25
CFI Apochromat LWD Lambda S 40XC WI, NA1.15
CFI Apochromat Lambda S 60X Oil, NA1.49
CFI Apochromat TIRF
Diese Objektive weisen eine beispiellose NA
von 1,49 auf (unter Verwendung eines Standard-Deckglases und Immersionsöls),
die höchste Auflösung unter Nikon-Objektiven. Korrekturringe ermöglichen die
Optimierung von Punktspreizfunktionen für Aufnahmen bei unterschiedlichen Temperaturen
und gewährleisten konfokale Bilder höchster Qualität, unabhängig davon, ob Sie
Bilder bei Raumtemperatur oder bei 37 Grad Celsius aufnehmen.
CFI Apochromat TIRF 60X Oil, NA1.49 (left)
CFI Apochromat TIRF 100X Oil, NA1.49 (right)
High-Definition-DIC-Bilder
Das C2 + kann simultane Drei-Kanal-Fluoreszenz- oder simultane dreikanalige und diaskopische DIC-Beobachtungen erfassen. Hochqualitative DIC-Bilder und Fluoreszenzbilder können zur Unterstützung der morphologischen Analyse überlagert werden.
DIC-Bild
Überlagerung von DIC- und Fluoreszenzbildern
Intuitive Bedienung
Die überlegene Bedienbarkeit und vielfältige Analysefähigkeiten der NIS-Elemente Imaging-Software erfüllt sowohl Anfänger als auch erfahrene konfokale Benutzer. Darüber hinaus ermöglicht NIS-Elements eine intuitive Bedienung nicht nur von Nikon-Mikroskopen, sondern auch von Peripheriegeräten von Drittanbietern für eine breite Palette von Experimenten.
Multimode-Fähigkeit
Die hervorragende Bedienbarkeit und die vielfältigen Analysefunktionen der Bildbearbeitungssoftware NIS-Elements erfüllen die Ansprüche von sowohl Anfängern als auch erfahrenen Nutzern der konfokalen Mikroskopie. Darüber hinaus ermöglicht NIS-Elements eine intuitive Bedienung nicht nur von Nikon-Mikroskopen, sondern auch von Peripheriegeräten von Drittanbietern für eine breite Palette von Experimenten.
Entmischung (Unmixing)
Es sind zahlreiche Funktionen zur Analyse und Entmischung erfasster Spektren vorgesehen, während Spektralprofile allgemeiner Farbstoffe und fluoreszierender Proteine vorprogrammiert sind.
Leicht erkennbares Display zum Einstellen von Lasern, Detektoren etc.
Scannen von Parametereinstellungen
Schnelle und genaue spektrale Bildgebung: C2-DUS-Spektraldetektoreinheit
Hochgeschwindigkeits-Spektralbildgebung
Die Aufnahme eines 32-Kanal-Spektralbildes (512 x 512 Pixel) mit einem einzigen Scan in 0,6 Sekunden ist möglich. Außerdem können 512 x 32-Pixel-Bilder mit 24 fps aufgenommen werden
Genaue und schnelle Entmischung
Genaue spektrale Entmischung bietet maximale Leistung bei der Trennung von eng überlappenden Fluoreszenzspektren und die Beseitigung von Autofluoreszenz. Überlegene Algorithmen und schnelle Datenverarbeitung ermöglichen eine Entmischung in Echtzeit während der Bilderfassung.
Actin in einer HeLa-Zelle, die H2B-YFP exprimiert, gefärbt mit
Phalloidin-Alexa Fluor ® 488.
Spektralbild im Bereich von 500-692 nm, aufgenommen mit 488 nm Laseranregung
Probe mit freundlicher Genehmigung von: Dr. Yoshihiro Yoneda und Dr. Takuya Saiwaki, Faculty of Medicine, Osaka University
Spektralbild, aufgenommen mit einem 488 nm Laser
Nach dem Entmischen der Fluoreszenz wird GFP grün und YFP rot angezeigt (rechts).
Spektralkurve in der ROI
Breitband-Spektralbildgebung
Eine gleichzeitige Anregung mit vier Lasern (ausgewählt aus maximal acht Wellenlängen) ist verfügbar, was eine spektrale Bildgebung über breitere Bänder ermöglicht.
V-Filterfunktion
Filterlose Intensitätsanpassung ist möglich, indem gewünschte Spektralbereiche von 32 Kanälen ausgewählt werden, die mit dem Spektrum der verwendeten Fluoreszenzsonde übereinstimmen, und sie kombinieren, um die Filterfunktion durchzuführen.
Helle spektrale Bildgebung: C2-DUVB GaAsP Detektoreinheit
Hochempfindliche Spektralbildaufnahme
Mit einem GaAsP-PMT liefert der abstimmbare Emissionsdetektor C2-DUVB eine flexible Detektion von Fluoreszenzsignalen mit höherer Empfindlichkeit.
Variabler Erfassungswellenlängenbereich
Benutzerdefinierte Emissionsbänder können Bilder innerhalb eines ausgewählten Wellenlängenbereichs sammeln, wodurch die Notwendigkeit von Emissionsfiltern mit fester Bandbreite ersetzt wird.
Benutzer können den Emissionsbandbreitenbereich bis zu 10 nm definieren. Spektralbilder von mehrfach markierten Proben können durch Erfassen einer Reihe von Spektralbildern erhalten werden, während die Detektionswellenlängen geändert werden.
Basierend auf der Anwendung sind der virtuelle Bandpassmodus und kontinuierliche Bandpassmodalitäten auf der C2-DUVB auswählbar.
VB-Modus (variabler Bandpass) Aufnahme in 3 Kanälen
Der VB-Modus (Variable Bandpass) ermöglicht maximal 5-Kanal-Farbbild
CB (Continuous Bandpass) ermöglicht maximale 32-Kanal-Spektrum-Bildgebung
Zweiter Kanaldetektor
Ein optionaler zweiter GaAsP-PMT bietet Flexibilität bei der Detektion. Benutzer können ausgewählte Wellenlängen auf den zweiten Emissionskanal mit fester Bandbreite umleiten, indem sie einen dichroitischen Spiegel einfügen, während sie gleichzeitig die vom Benutzer definierbare Emissionsbande auf dem ersten Kanal verwenden.
Der zweite Detektor ermöglicht FRET, Ratio-Imaging und andere Anwendungen, die eine gleichzeitige Mehrkanal-Bildgebung erfordern.
Genaue spektrale Entmischung
Mehrkanalbilder, die mit dem C2-DUVB aufgenommen wurden, können spektral entmischt werden, indem die Spektren von Referenzproben oder die Spektren innerhalb der aufgenommenen Bilder verwendet werden.
Flexibilität
Das C2 + kann mit aufrechten, invertierten, elektrophysiologischen und makroskopischen Mikroskopen gekoppelt werden und verfügt über Kombinationsmöglichkeiten mit verschiedenen hochwertigen Forschungs-Systemen. Alle können mit NIS-Elements Software gesteuert werden.
TIRF / Photoaktivierung - C2 + Multimode-Bildgebungssystem
Mit seinem Ausgangsfaser-Schaltsystem kann die LU-NV-Lasereinheit mehrere Laseranwendungen wie C2 +, TIRF und Photoaktivierung unterstützen. Dies ermöglicht eine hochauflösende konfokale Bildgebung, die Abbildung einzelner Moleküle mit einem extrem hohen Signal-Rausch-Verhältnis und die Abbildung der Veränderungen der Fluoreszenzcharakteristika von photoaktiviertem und photokonvertierbarem fluoreszierendem Protein, alles auf einer einzigen Mikroskopplattform.
Konfiguration mit TIRF-Beleuchtungssystem
AZ-C2 + Macro-Konfokalmikroskopsystem
Das AZ-C2 + Makro-Konfokalsystem ermöglicht die konfokale Bildaufnahme von großen Proben (> 1cm) mit hoher Auflösung. Atemberaubende, große Sichtfeld-Aufnahmen mit außergewöhnlich hohen Signal-Rausch-Verhältnissen von ganzen Embryonen und großen Gewebeschnitten können in einer einzigen Aufnahme mit Pixelauflösungen von bis zu 2048x2048 erfasst werden.
Darüber hinaus bietet das konfokale AZ-C2 + -Makro eine Kombination aus Objektiven mit niedriger und hoher Vergrößerung, variablem optischen Zoom und konfokaler Scanning-Zoom-Funktion, die eine kontinuierliche Bildgebung von Makro zu Mikro mit einem einzigen Mikroskop ermöglicht.
Das AZ-C2 + -Makro-Konfokal ermöglicht in vivo Konfokale Bildgebung von Makroskopen, die mit herkömmlichen Stereomikroskopen nicht möglich ist.
TT2 ES-Zellen
Anti-Nanog-Antikörper (Cy3), Anti-Oct3 / 4-Antikörper (Alexa Fluor® 488) und DAPI in Zellkernen lokalisiert
Foto mit freundlicher Genehmigung von: Dr. Hiroshi Kiyonari, Laboratory for Animal Resources and Genetic Engineering, RIKEN Center for Developmental Biology
Foto mit freundlicher Genehmigung von:
Professor Masatoshi Yamamoto, Kyoto Institute of Technology
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